Новая линия мезенхимных стволовых клеток, выделенная из вартонова студня пупочного канатика донора мужского пола

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

Получена и охарактеризована новая неиммортализованная фибробластоподобная клеточная линия, названная MSCWJ-3. Характеристики в процессе длительного культивирования (6–24 пассажи), подтверждают статус МСК. Показано: 1) постепенное увеличение доли стареющих клеток в процессе длительного культивирования; 2) значительное снижение индекса пролиферации к 24-му пассажу; 3) сохранение нормального диплоидного кариотипа мужчины (46, XY) в процессе всего срока культивирования, трисомия по разным аутосомам в единичных клетках, отсутствие структурных хромосомных перестроек; 4) высокая доля клеток, несущих поверхностные антигены, характерные для МСК: CD44, CD73, CD90, CD105, HLA-ABC и низкая – с антигенами CD34, CD45 и HLA-DR на протяжении 24 пассажей. Клетки линии MSCWJ-3 способны дифференцироваться в остеогенном и адипогенном направлениях на ранних и поздних пассажах; дифференцировка в хондрогенном направлении отсутствует. В целом отмечаются некоторые различия с ранее полученными линиями, выделенными из этого же источника и связанные, в основном, со степенью выраженности ряда статусных характеристик.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

А. М. Кольцова

Институт цитологии РАН

Автор, ответственный за переписку.
Email: koltsova.am@mail.ru
Россия, Санкт-Петербург

А. С. Мусорина

Институт цитологии РАН

Email: koltsova.am@mail.ru
Россия, Санкт-Петербург

В. И. Турилова

Институт цитологии РАН

Email: koltsova.am@mail.ru
Россия, Санкт-Петербург

А. Н. Шатрова

Институт цитологии РАН

Email: koltsova.am@mail.ru
Россия, Санкт-Петербург

Т. К. Яковлева

Институт цитологии РАН

Email: koltsova.am@mail.ru
Россия, Санкт-Петербург

Г. Г. Полянская

Институт цитологии РАН

Email: gpolanskaya@gmail.com
Россия, Санкт-Петербург

Список литературы

  1. Кольцова А.М., Зенин В.В., Петросян М.А., Турилова В.И., Яковлева Т.К., Полянская Г.Г. 2020. Получение и характеристика линий мезенхимных стволовых клеток, выделенных из разных областей плаценты одного донора. Цитология. Т. 62. № 9. С. 713. (KoltsovaA.M., Zenin V.V., PetrosyanM.A., Turilova V.I., Yakovleva T.K., Poljanskaya G.G. 2021. Isolation and characterization of Mesenchymal Stem Cell Line Derived from different regions of the placenta of the same donor. Cell Tiss. Biol. V. 15. P. 356.) https://doi.org/10.31857/S0041377120090035
  2. Кольцова А.М., Зенин В.В., Турилова В.И., Яковлева Т.К., Полянская Г.Г. 2018. Получение и характеристика линии мезенхимных стволовых клеток, выделенных из пульпы молочного зуба человека. Цитология. Т. 60. № 12. С. 955. (KoltsovaA.M., Zenin V.V., Turilova V.I., Yakovleva T.K., Poljanskaya G.G. 2018. The derivation and characterization of mesenchymal stem cell line, isolated from human pulp of a deciduous tooth. Tsitologiya. V. 60. P. 955.) https://doi.org/10.1134/S0041377118120015
  3. Кольцова А.М., Зенин В.В., Турилова В.И., Яковлева Т.К., Полянская Г.Г. 2019. Получение и характеристика линии мезенхимных стволовых клеток, выделенной из десны человека. Цитология. T. 61. № 8. С. 658. (Koltsova A.M., Zenin V.V., Turilova V.I., Yakovleva T.K., Poljanskaya G.G. 2019. The derivation and characterization of mesenchymal stem cell line, isolated.)
  4. Кольцова А.М., Зенин В.В., Яковлева Т.К., Полянская Г.Г. 2015. Характеристика новой линии мезенхимных стволовых клеток, выделенных из эмбриональных стволовых клеток человека. Цитология. Т. 57. № 11. С. 761. (Koltsova A.M., Zenin V.V., Yakovleva T.K., Poljanskaya G.G. 2015. Сharacteristics of new mesenchymal stem cell line derived from human embryonic stem cells. Tsitologiya. V. 57 P. 761. from human gingival. Tsitologiya. V. 61. P. 658.) https://doi. 10.1134/S0041377119080029
  5. Кольцова А.М. Крылова Т.А., Мусорина А. С., Зенин В.В., Турилова В. И., Яковлева Т. К., Полянская Г.Г. 2017. Динамика свойств двух линий мезенхимных стволовых клеток, полученных из Вартонова студня пупочного канатика человека, при длительном культивировании. Цитология. Т. 59. № 9. С. 574. (Koltsova A.M., Krylova T.A., Zenin V.V., Turilova V.I., Yakovleva T.K., Poljanskaya G.G. 2017. Dynamics properties of two lines of mesenchymal stem cells, derived from the Wharton’ jelly of the human umbilical cord, during long-term cultivation. Tsitologiya. V. 59. P. 574.)
  6. Крылова Т.А., Кольцова А.М., Зенин В.В, Мусорина А.С., Яковлева Т.К., Полянская Г.Г. 2012. Сравнительные характеристики новых линий мезенхимных стволовых клеток, полученных из эмбриональных стволовых клеток, костного мозга и крайней плоти человека. Цитология. 54. № 1. С. 5. (Krylova T.A., Koltsova A.M. Zenin V.V., Musorina A.S., Yakovleva T.K., Poljanskaya G.G. 2012. Comparative characteristics of new mesenchymal stem cell lines derived from human embryonic stem cells, bone marrow and foreskin. Tsitologiya. V. 54. P. 5)
  7. Крылова Т.А., Кольцова А.М., Мусорина А.С., Зенин В.В., Турилова В.И., Яковлева Т.К., Полянская Г.Г. 2017. Характеристика двух линий мезенхимных стволовых клеток, полученных из Вартонова студня пупочного канатика человека. Цитология. Т. 59. № 5. С. 315. (Krylova T.A., Koltsova A.M., Musorina A.S., Zenin V.V., Turilova V.I., Yakovleva T.K., Poljanskaya G.G. 2017. Derivation and characteristic of two lines of human mesenchymal stem cells, generated from the Wharton’s jelly of the human umbilical cord. Tsitologiya. V. 59. P. 315.)
  8. Луппа Х. 1980. Методы гистохимического выявления неорганических веществ. В кн.: Основы гистохимии. Москва: Мир. С. 267. (Luppa X. 1980. Methods for histochemical detection of inorganic substances. In: Fundamentals of histochemistry. Moscow: Mir. P. 267.)
  9. Мусорина А.С., Зенин В.В., Турилова В.И., Яковлева Т.К., Полянская Г.Г. 2019. Характеристика неиммортализованной линии мезенхимных стволовых клеток, выделенных из эпикардиальной жировой ткани человека. Цитология. Т. 61. № 4. С. 272. (Musorina A.S., Zenin V.V., Turilova V.I., Yakovleva T.K., Poljanskaya G.G. 2019. a Rzat of a nonimmortalized mesenchymal stem cell line isolatedfrom human epicardial adipose tissue. Cell Tiss. Biol. V. 13. P. 247.)
  10. Мусорина А.С., ТуриловаВ.И., Шатрова А.Н., Яковлева Т.К., Полянская Г.Г. 2023. Получение и сравнительная характеристика линий мезенхимных стволовых клеток, выделенных из пульпы молочного зуба детей разного возраста. Цитология Т. 65. № 5. С. 420. (Musorina A.S., Shatrova A.N., Turilova V.I., Yakovleva T.K., Poljanskaya G.G. 2019. The derivation and comparative characterization of mesenchymal stem cell lines, isolated from human pulp of a deciduous tooth of children of different sexes. Tsitologiya. V. 65. P. 420.)
  11. Полянская Г.Г. 2018. Сравнительный анализ характеристик линий мезенхимных стволовых клеток человека, полученных в коллекции культур клеток позвоночных (обзор). Сб. «Клеточные культуры», Т. 34. C. 3. (Poljanskaya G.G. 2018. Comparative analysis of the lines of human mesenchymal stem cells derived in the collection of cell cultures of vertebrates (review). Collection «Cell cultures». V. 34. P. 3.)
  12. Седова Г.П. 2008. Количественные аспекты злокачественного роста. Математическая морфология. Электронный математический и медико-биологический журнал. Т. 7. № 2. (Sedova G. P. 2008. Quantitative aspects of malignant body height. Mathematical morphology. Electronic Math. Medicobiol. J. V. 7.)
  13. http://sgma.alpha-design.ru/MMORPH/N-18-html/sedova/sedova.htm
  14. Alavi-Dana S., Gholami Y., Meghdadi M., Fadaei S., Askari V. 2023. Mesenchymal stem cell therapy for COVID-19 infection. Inflammopharmacol. V. 32. P. 1. https://doi.org/10.1007/s10787-023-01394-8
  15. Antonucci I., Stuppia L., Kaneko Y., Yu S., Tajiri N., Bae E.C., Chheda S.H., Weinbren N.L., Borlongan C.V. 2011. Amniotic fluid as rich source of mesenchymal stromal cells for transplantation therapy. Cell Transplant. V. 20. P. 789. https://doi.org/10.3727/096368910x539074
  16. Ashiba K., Mino K., Okido Y., Sato K., Kawakami H. 2023. Senescence recovering by dual drug-encapsulated liposomal nanoparticles for large-scale humancell expansion. J. Artif. Organs V. 26. P. 246. https://doi.org/10.1007/s10047-022-01356-x
  17. Ashoobi M., Hemmati H., Aghayan H., Zarei-Behjani Z., Keshavars S., Babaloo H., Maroufizadeh S., Yousefi S., Farzin M., Vojoudi E. 2024. Wharton’s jelly mesenchymal stem cells transplantation for critical limb ischemia in patients with type 2 diabetes mellitus: A preliminary report of phase 1 clinical trial. Cell Tissue Res. V. 395. P. 211. https://doi.org/10.1007/s00441-023-03854-7
  18. Barkholt L., Flory E., Jekerle V., Lucas-Samuel S., Ahnert P., Bisset L., Buscher D., Fibbe W., Foussat A., Kwa M., Lantz O., Maciulaitis R., Palomaki T., Schneider C.K., Sensebe L., Tachdjian G., Tarte K., Tosca L., Salmikangas P. 2013. Risk of tumorigenicity in mesenchymal stromal cell-based therapies – bridging scientific observations and regulatory viewpoints. Cytother. V. 15. P. 753. https://doi.org/10.1016/j.jcyt.2013.03.005
  19. Bruckner S., Capria V, Zeno B., Leblebicioglu B., Goyal K., Vasileff W., Avan H., Willis W., Ganesan L., Jarjour W. 2023. The therapeutic effects of gingival mesenchymal stem cells and their exosomes in a chimeric model of rheumatoid arthritis. Arthritis Res. Ther. V. 25. P. 211. https://doi.org/10.1186/s13075-023-03185-6
  20. Chen Y., Wang X., Wu Z., Jia S., Wan M. 2023. Epigenetic regulation of dental-derived stem cells and their application in pulp and periodontal regeneration. Biochem., Biophys. Mol. Biol. V. 11: e14550. https://doi.org/10.7717/peerj14550
  21. Chopra H., Cao C., Sommer C., Dahlkemper A., Sugai J., Sherley J., Kaigler D. 2023. Quantification of the culture stability of stem cell fractions from oral-derived, human mesenchymal stem cell preparations: A significant step towards the clinical translation of cell therapies. Cells. V. 12. P. 2703. https://doi.org/10.3390/cells12232703
  22. Conconi M.T., Di Liddo R., Tommasini M., Calore C., Parnigotto P.P. 2011. Phenotype and differentiation potential of stromal populations obtained from various zones of human umbilical cord: an overview. J. Open Tiss. Eng. Reg. Med. V. 4. P. 6.
  23. Cui E., Lv Lu.,Chen W., Chen Na., Pan R. 2023. Mesenchymal stem/stromal cell-based cell-free therapy for the treatment of acute lung injury. J. Cell. Ther. V. 124. P. 1241. https://doi.org/10.1002/jcb.30469
  24. Dominici M., Le Blanc K., Mueller I., Slaper-Cortenbach I., Marini F., Krause D., Deans R., Keating A., Prockop Dj., Horwitz E. 2006. Minimal criteria for defining multipotent mesenchymal stromal cells. Int. Soc. Cell. Ther. Position Statement. Cytother. V. 8. P. 315. https://doi.org/10.1080/14653240600855905
  25. Drobiova H., Sindhu S., AhmadR., HaddadD., Al-Mulla F., Madhoun A. 2023; Wharton’s jelly mesenchymal stem cells: a concise review of their secretome and prospective clinical application. Front. Cell Dev. Biol. V. 11: 1211217. https://doi.org/10.3389/fcell.2023.1211217
  26. Fard A., Leeson H., Aguado J., Pietrogrande G., Power D., Gomez-Inclan C., Zheng H., Nelson, Soheilmjghaddam F., Glass N., Dharmaratne M., Watson E., Lu J., Martin S., Pickett H., Coope-White J., Wolvetang E., Mar J. 2024. Deconstructing heterogeneity of replicative senescence in human mesenchymal stem cells at single cell resolution. V. 46. P. 999. https://doi.org/10.1007/s11357-023-00829-y
  27. Faria J., Cervera S., Skovronova R., Broeksma B., Berends A., Zaal E., Bussolati B., O’ Brien T., Michaila S., Masereeuw R. 2023. Mesenchymal stromal cells secretome restores bioenergetic and redox homeostasis in human proximal tubule cells after ischemic injury. Stem Cell Res. V. 14. P. 353. https://doi.org/10.1186/s13287-023-03563-6
  28. Gorio A., Gao H., Klinger M., Vinci V., Paino F. 2024. Mechanically activated adipose tissue as a source for novel therapies in neurological disease/injury. Curr. Stem Cell Res. Ther. V. 19. P. 688. https://doi.org/10.2174/1574888X1866623060 5120546
  29. Jin Q., Yuan K., Lin W., Niu C., Ma R., Huang Z. 2019. Comparative characterization of mesenchymal stem cells from human dental pulp and adipose tissue for bone regeneration potential. Artif. Cells Nanomed. Biotechnol. V. 47. P. 1577. https://doi.org/10.1080/21691401.2019.1594861
  30. Hatori A., Yamakawa D., Al-Maaw Si., Dohle E., Chikira J., Fujii Y., Miki M., Sader R., Chikazu, Ghanaati S., Kawase-Koga Y. 2023. Platelet-Rich fibrin-conditioned medium as an alternative to fetal bovine serum promotes osteogenesis of human dental pulp stem cells. Bioengineering V. 10. P. 1196.
  31. Hsu Y-H., Chen C-N., Chang H-I., Tsai H-L., Chang Y-H., Cheng I-S., Yang Y-S., Huang K-Y. 2023. Manipulation of osteogenic and adipogenic differentiation of human degenerative disc and ligamentum flavum derived progenitor cells using IL-ip, IL-19 and IL-20. Eur. Spine J. V. 32. P. 3413. https://doi.org/10.1007/s00586-023-07878-z
  32. Huang H.I., Chen S.K., Ling Q.D., Chien C.C., Liu H.T., Chan S.H. 2010. Multilineage differentiation potential of fibroblast-like stromal cells derived from human skin. Tiss. Eng. A. V. 16. P. 1491. https://doi.org/10.1089/ten TEA.2009.0431
  33. Kanafi M. and Bronde R. 2024. Diverse approaches toward application of dental pulp stem cells from human permanent and deciduous teeth in the treatment of diabetes. Curr. Diabetes Rev. V. 20: e210323214822. https://doi.org/10.2174/1573399819666230321120734
  34. Kim S., Kwon S., Chung S., Lee E., Park S., Choi J. Oh S., Ryu G., Jeon H., Chang J . 2023. Nervonic acid inhibits replicative senescence of human Wharton’s Jelly-derived mesenchymal stem cells. Int. J. Stem Cells. V. 17. P. 80. https://doi.org/10.15283/ijsc23101
  35. Li J., Xu S-Q., Zhao Y-M, Yu S., Ge L-H., Xu B-H. 2018. Comparison of the biological characteristics of human mesenchymal stem cells derived from exfoliated deciduous teeth, bone marrow, gingival tissue, and umbilical cord. Mol. Med. Rep. V. 18. P. 4969. https://doi.org/10.3892/mmr.2018.9501
  36. Lifshagerd M., Safari F. 2023. Therapeutic effects of hAMSCs secretome on proliferation of MDA-MB-231 breast cancer cells by the cell cycle arrest in G1/S phase. Clin. Transl. Oncol. V. 25. P. 1702. https://doi.org/10.1007/s12094-022-03067-4
  37. McGowan-Jordan J., Simons A., Schmid M. 2016. An international system for human cytogenetic nomenclature. Basel: S. Karger. 140 p.
  38. Mahmoodi M., Cheraghi E., Riahi A. 2024. The effect of Warton’s Jelly-derived conditioned medium on the in vitro maturation of immature oocytes, embryo development and genes expression involved apoptosis. Reprod. Sci. V. 31. P. 190. https://doi.org/10.1007/s43032-023-01345-2
  39. Mamidi M.K., Pal R., Mori N.A., Arumugam G., Thrichelvam S.T., Noor P.J., Abdullah H.M., Gupta P.K., Das A.K., Zakaria Z., Bhonde R. 2011. Co-culture of mesenchymal-like stromal cells derived from human foreskin permits long term propagation and differentiation of human embryonic stem cells. J. Cell Biochem. V. 112. P. 1353. https://doi.org/10.1002/jab.23052
  40. Mert S., Malyaran H., Craveiro R., Wolf M., Modabber A., Jahnen-Dechent W., Neuss S. 2023. Comparative analysis of proliferative and multilineage differentiation potential of human periodontal ligament stem cells from maxillary and mandibular molars. J. Periodontal. V. 94. P. 882. https://doi.org/10.1002/JPER.22-0706
  41. Monterubbianesi R., Bencun M., Pagella P., Woloszyk A., Orsini G., Mitsiadis T.A. 2019. A comparative in vitro study of the osteogenic and adipogenic potential of human dental pulp stem cells, gingival fibroblasts and foreskin fibroblasts. Sci. Rep. V. 9. P. 1761.
  42. Mou C., Wang X., Li W., Li Z., Liu N., Xu Y., 2023. Efficacy of mesenchymal stromal cells intraspinal transplantation for patients with different degrees of spinal cord injury: A systematic review and meta-analysis. Cytotherapy. V. 25. P. 530. https://doi.org/10.1016/jjcyt.2023.01.012
  43. Ozkinay C., Mitelman F. 1979. A simple trypsin-Giemsa technique producing simultaneous Gand C-banding in human chromosomes. Hereditas. V. 90. P. 1. https://doi.org/10.1111/j.1601-5223.1979.tb01287.x
  44. Poblano-Perez L., Casto-Manrreza, Gonzalez-Alva P., Fajardo-Orduna G., Montesinos J. 2024. Mesenchymal stromal cells derived from dental tissues: Immunomodulatory properties and clinical potencial. Int. J. Mol. Sci. V. 25. P. 1986. https://doi.org/10.3390/ijms25041986
  45. Poljanskaya G., Bobkov D., Koltsova A., Musorina A., Mikhailova N. 2022. Creation, working principles, development of applied and scientific activities of the Collection of Cell Cultures of Vertebrate. (review). Biol. Communs. V 67. P 312. https://doi.Org/10.21638./spbu03.2022.406
  46. Rahmani-Moghadam E., Zarrin V., Mahmoodzadeh A., Owrang M., Talaei-Khozani T. 2022. Comparison of the characteristics of Breast Milk derived stem cells with the stem cells derived from the other sources: a comparative review. Curr. Stem Cell Res. Ther. V. 17. P. 71. https://doi.org/10.2174/1574888X16666210622 125309
  47. Reyes M., Lund T., Lenvik T., Aguiar D., Koodie L., Verfaillie C.M. 2001. Purification and ex vivo expansion of postnatal human marrow mesodermal progenitor cells. Blood. V. 98. P. 2615. https://doi.org/10.1182/blood.v98.9.2615
  48. Riekstina U., Cakstina I., Parfejevs V., Hoogduijn M., Jankovskis G., Muiznieks I., Muceniece R., Ancans J. 2009. Embryonic stem cell marker expression pattern in human mesenchymal stem cells derived from bone marrow, adipose tissue, heart and dermis. Stem Cell Rev. V. 5. P. 378. https://doi.org/10.1007/s12015-009-9094-9
  49. Rojas J., Munerala L., Mira S. 2024. Comparison between platelet lysate, platelet lysate serum and Fetal bovine serum as supplements for cell culture, expansion, and cryopreservation. Biomedicines. V. 12. P. 140. https://doi.org/10.3390/biomedicines12010140vedi
  50. Sattar M., Lingens L., Guillaume V., Goetzl R., Beier J., Ruhl T. 2024. Association between donor age and osteogenic potencial of human adipose stem cells in bone tissue engineering. V. 46. P. 1424. https://doi.org/10.3390/cimb46020092
  51. Saxena P., Srivastava J., Rai B., Tripathy N., Raza S., Sinha R., Gupta R., Yadav S., Nityanand S., Chaturvedi C. 2024. Elevated senescence in the bone marrow mesenchymal stem cells of acquired aplastic anemia patients: a possible implication of DNA damage responses and telomere attrition. Biochim. Biophys. Acta Mol. Basis Dis. V. 1870: 167025. https://doi.org/10.1016/_j.bbadis.2024.167025
  52. Selvaraj S., Rupert S., Nandabalan S., Anbalagan C., Rajaram P., Satyanesan J., Vennila R., Rajagopal S. 2024. Effect of cell-derived matrices on growth and differentiation of human Wharton’s Jelly-derived mesenchymal stem cells. Cells Tissues Organs. V. 213. P. 67. https://doi.org/10.1159/000526153
  53. Semenova E., Grudniak M. P., Machaj E.K., Bocian K., Chroscinska-Krawczyk M., Trochonowicz I.M.M.K.E.D T.J.T.N. 2021. Mesenchymal stromal cells from different parts of umbilical cord: approach to comparison and characteristics. Stem Cell Rev. Rep. V. 17. P. 1780.
  54. Sensebé L., Krampera M., Schrezenmeier H., Bourin P., Giordano R 2010. Mesenchymal stem cells for clinical application. Vox Sang. V. 98. P. 93. https://doi.org/10.1111/j.1423-0410.2009.01227.x
  55. Shin S.., Lee J.., Kwon Y., Park K-S. Jeong J-H., Choi S-J., Bang S.J.,C. 2021. Comparative proteomic analysis of the mesenchymal stem cells secretome from adipose, bone marrow, placenta and Wharton’s jelly. Int. J. Mol. Sci. V. 22: 845.
  56. Sonoyama W., Liu Y., Yamaza T., Tuan RS., WangS., Shi S., Huang G.T. 2008. Characterization of the apical papilla and its residing stem cells from human immature permanent teeth: a pilot study. J. Endod. V. 34. P. 166. https://doi.org/10.1016/j.joen.2007.11.021
  57. Sousa A., Coelho P., Leite F., Teixeira C., Rocha A., Santos I., Baylina P., Fernandes R., Soares R., Costa R, Gomes A. 2023. Impact of umbilical cord mesenchymal stromal/stem cell secretome and cord blood serum in prostate cancer progression. Hum. Cell. V. 36. P. 1160. https://doi.org/10.1007/s13577-023-00880-z
  58. Stanko P., Kaiserova K., Altanerova V., Altaner C. 2014. Comparison of human mesenchymal stem cells derived from dental pulp, bone marrow, adipose tissue, and umbilical cord tissue by gene expression. Bio. Pap. Med. Fac. Univ. Palacky Olomouc Czech Repub. V. 158. P. 373. https://doi.org/10.5507/bp.2013.078
  59. Szepesi A., Manila Z., Szigeti A., Varady G., Szalma J., Szabo G., Ghur F., Sarkadi B., Nemet K. 2016. In vitro characterization of human mesenchymal stem cells isolated from different tissues with a potential to promote complex bone regeneration. Stem Cells Int. V. 2016: 3595941. https://doi.org/10.1155/2016/3595941
  60. Tai C., Wang L., Xie Y., Gao T., Huang F., WangB. 2021. Analysis of key distinct biological characteristics of human placenta-derived mesenchymal stromal cells and individual heterogeneity attributing to donors. Cell Tiss. Organs. V. 210. P. 45. https://doi.org/10.1159/000513038
  61. Tan S., Aisyah P., Firmansyah Y., Nathasia N., Budi E., Hendrawan S. 2023. Effectiveness of secretome from human umbilical cord mesenhymal stem cells in gel (10%) SM- hUCMSC Gel) for chronic wounds (Diabetic and Trophic Ulcer) – Phase 2 Clinical trial. J. Multidiscip Healthc. V. 16. P. 1763. https://doi.org/10.2147/JMDH>S408162
  62. Tomcy T.A., Sindhu E. 2023. Mesenchymal stem cells- an excellent therapeutic agent for cancer. Asia Pac. J. Clin. Oncol. V. 20. P. 7. https://doi.org/10.1111/ajco.13969
  63. Topoluk N., Hawkins R., Tokish J., Mercuri J. 2017. Amnionic mesenchymal stromal cells exhibit preferential osteogenic and chondrogenic differentiation and enhanced matrix production compared with adipose mesenchymal stromal cells. Am. J. Sports Med. V. 45. P. 2637. https://doi.org/10.1177/0363546517706138
  64. Turano E., Scambi I., Virla F., Bonetti B., Mariotti R. 2023. Extracellular vesicles from mesenchymal stem cells: towards novel therapeutic strategies for neurodegenerative diseases. Int. J. Mol. Sci. V. 24. P. 2917. https://doi.org/10.3390/ijms24032917
  65. Wu W., Zhou J., Xu C-T., Zhang J., Jin Y-J., Sun G-L. 2022. Derivation and growth characteristics of dental pulp stem cells from patients of different ages. Mol. Med. Rep. V. 12. P. 5127. https://doi.org/10.3892/mmr.2015.4106
  66. Yi X., Liu F., Chen F., Wang Y., Gao Y. 2022. Comparison of biological characteristics of placenta mesenchymal stem cells derived from fetus. Chin. J. Biotechnol. V. 38. P. 1183. https://doi.org/10.13345Zj.cjb.210244
  67. Yigitbilek F., Conley S.M., Tang H., Saadiq I.M., Jordan K.L., Lerman L.O: Taner T. 2021. Comparable in vitro function of human liver-derived and adipose tissue-derived mesenchymal stromal cells: Implications for cell-based therapy. Front Cell Dev. Biol. V. 9: 641792. https://doi.org/10.3389/fcell.2021.641792
  68. Zhang W., Walboomers X.F., Shi S., Fan M., Jansen J.A. 2006. Multilineage differentiation potential of stem cells derived from human dental pulp after cryopreservation. Tissue Eng. V. 12. P. 2813. https://doi.org/10. 1089/ten.2006.12.2813
  69. Zhao Q., Larios K., Naaldijk Y., Sherman L., Chemerinski A., Okereke K., Rameshwar P., Lemenze A., Douglas N., Morelli S. 2023. Mesenchymal stem cell secretome alters gene expression and upregulates motility of human endometrial stromal cells. Reproduction. V. 166. P. 161. https://doi.org/10.1530/REP-22-0485
  70. Zhu X., Xu X., Shen M., Wang Y., 2023. Transcriptomic heterogeneity of human mesenchymal stem cells derived from bone marrow, dental pulp, adipose tissue and umbilical cord. Cell Reprogram. V. 25. P. 162. https://doi.org/10.1089/cell.2023.0019
  71. Zou D., Vigen M., Putman A., Cao C., Tarle S., Guinn T., Kaigler D. 2022. Phenotypic, trophic, and regenerative properties of mesenchymal stem cells from different osseous tissues. Cell Tiss. Res. V. 388. P. 75. https://doi.org/10.1007/s00441-021-03563-z

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать
2. Рис. 1. Морфология клеток линии MSCWJ-3 на пассажах 6 и 24. Прижизненные фотографии. Инвертированный световой микроскоп Nicon Eclipse TS100 (Япония). Масштабная линейка: 200 мкм.

Скачать (486KB)
Метаданные
3. Рис. 2. Кривые роста клеток линии MSCWJ-3 на пассажах 6 (кривая 1), 16 (кривая 2) и 24 (кривая 3).

Скачать (105KB)
Метаданные
4. Рис. 3. Кариотип клеточной линии MSCWJ-3. Нормальный кариотип: 46, XY. На врезках показаны трисомии по разным аутосомам, выявленные в единичных клетках с числом хромосом 47, на пассажах 6, 16 и 24.

Скачать (133KB)
Метаданные
5. Рис. 4. Идентификация маркеров ранней дифференцировки эмбриональных стволовых клеток человека в клетках линии MSCWJ-3 на 6-м пассаже по флуоресценции соответствующих моноклональных антител. Зеленым цветом показаны маркеры эктодермы (нестин), мезодермы (α-актинин), энтодермы (α-фетопротеин). Ядра окрашены Hoechst 33342. Масштабная линейка: 100 мкм.

Скачать (973KB)
Метаданные
6. Рис. 5. Визуализация дифференцировки клеток линии MSCWJ-3 в адипогенном и остеогенном направлении на пассажах 6 и 24. Жировые включения (адипогенная дифференцировка) окрашены масляным красным (масштабная линейка: 100 мкм), соли кальция в межклеточном пространстве выявлены окраской ализариновым красным и реакцией Вон Косса (масштабная линейка: 200 мкм).

Скачать (1MB)
Метаданные

© Российская академия наук, 2024