Adaptation of meristem strawberry plants in ex vitro conditions use of an Emistim
- Authors: Matsneva O.V.1, Tashmatova L.V.1, Khromova T.M.1
-
Affiliations:
- Russian Research Institute of Fruit Crop Breeding
- Issue: No 2 (2025)
- Pages: 31-36
- Section: Crop Production and Selection
- URL: https://rjonco.com/2500-2082/article/view/684944
- DOI: https://doi.org/10.31857/S2500208225020077
- EDN: https://elibrary.ru/HUQAVM
- ID: 684944
Cite item
Full Text
Abstract
The article presents data on the influence of the elicitor Emistim on the process of adaptation of meristem plants of garden strawberries to non-sterile conditions. The objects of the study were micropropagated strawberry plants of six industrial varieties: Asia (NF 421), Darselect, Florence, Honeoye, Kimberly, Syria (NF 137). The use of emistim solution at the stage of planting strawberry plants in vitro in non-sterile conditions made it possible to increase the yield of adapted plants for individual genotypes to 100%. The maximum yield of adapted plants was noted in the Florence variety with all methods and periods of exposure to Emistim. On average, for varieties, biometric indicators for all methods of treating plants with Emistim exceeded the control indicators, the adaptation period was reduced by 5-7 days. The maximum number of leaves after 30 days of adaptation was formed under the influence of Emistim within 1 hour (6.4 ± 0.3). The length of the roots after 30 days of cultivation exceeded the control indicators by 10–18%, after 40 days – by 15–25%. The optimal method of plant treatment can be considered soaking the basal part of strawberry rosettes in a solution of emistim for 1 hour. The possibility of enhancing the immunity of strawberry plants obtained in vitro at the stage of adaptation to non-sterile environmental conditions and during the period of growing with the help of a new generation preparation Emistim, which has a positive effect on their growth and development, was revealed. The results of the studies allow us to recommend this technology for use in the system of mass production of high-quality strawberry planting material.
Full Text
Микроклональное размножение – одно из основных перспективных, экологически безопасных методов размножения растений. Данная технология представляет собой сложный многофакторный физиологический процесс, состоящий из принципиально разных этапов in vitro и ex vitro, включающий в себя с одной стороны морфогенез и регенерацию в условиях in vitro, с другой, структурно-функциональную адаптацию регенерантов в условиях ex vitro. [17]
Необходимое условие коммерческого использования технологии in vitro – успешная акклиматизация микроразмноженных растений. Правильная акклиматизация растений, выращенных in vitro, в условиях ex vitro гарантирует успешное завершение систем регенерации растительных тканей. [6] Акклиматизация требует соответствующей закалки и предварительной подготовки растений, выращенных in vitro, для повышения выживаемости в нестерильных условиях внешней среды. [16] После пересадки при ex vitro микроразмноженные растения подвергаются изменениям температуры, интенсивности света и условиям водного стресса. [11] Период акклиматизации критический у меристемных растений для восстановления нормальной фотосинтетической активности и метаболических функций. Во время этой фазы нормализуется устьичная регуляция, что способствует образованию новых листьев, с обычными анатомическими и физиологическими признаками, подходящими для выживания в естественных условиях окружающей среды. [18] Изменение условий культивирования на ex vitro вызывает адаптационные механизмы – ткани листа начинают расширяться и дифференцироваться, а количество и площадь устьиц уменьшаются. [14]
Важная проблема, связанная с получением качественных растений земляники, – повышение их выносливости при адаптации. [15] Во время акклиматизации уровень выживаемости микрорастений должен превышать 55%, чтобы обеспечить разумную рентабельность. [12] Для эффективного управления ростовой активностью сельскохозяйственных культур стали применять природные биорегуляторы, обладающие ростостимулирующим, иммуномоделирующим и антистрессовым действием. Регуляторы роста нового поколения оказывают тройное действие на растения: стимулируют физиологические процессы, повышают их устойчивость к биотическим и абиотическим стрессовым факторам окружающей среды и усиливают неспецифический иммунитет. [10, 13, 19] Их применение в сверхмалых гектарных нормах в садоводстве обеспечивает их низкую стоимость, сравнительную безопасность для человека и природной среды, возможность помогать растениям экологически естественным способом, усиливая их природную способность противостоять стрессам. Биостимуляторы могут содержать гуминовые и фульвокислоты, экстракты морских водорослей, полезные грибы, макро- и микроэлементы, а также аминокислоты, которые улучшают рост растений и повышают их урожайность, стимулируя биосинтез белка, активируя ферменты и облегчая усвоение макро- и микроэлементов. [20]
Препарат Эмистим относится к группе элиситоров – биорегуляторов роста и корнеобразования,
природный продукт метаболизма симбионтного гриба Acremonium lichenicola, выделенного из корней женьшеня, содержащего сбалансированную композицию из 75 физиологически активных веществ, в том числе фитогормонов цитокининовой, ауксиновой и гиббереллиновой природы, аминокислот, жирных кислот, углеводов, микроэлементов. [8]
Преимущество использования Эмистима заключается в его экологической безопасности, малых концентрациях рабочего раствора, индуцировании естественных механизмов устойчивости у растений к неблагоприятным факторам среды. [17]
Успешное применение Эмистима на жимолости и черной смородине, а также землянике открытого грунта путем опрыскивания вегетирующих растений было продемонстрировано в работах ученых. [3, 9] Эмистим во время пересадки микроразмноженных растений винограда из стерильных в условия ex vitro улучшал укоренение и выживаемость, уменьшал шок, сокращал фазы адаптации, увеличивал вегетативный рост, изменял морфологию корней и снижал гибель во время адаптации. [2] При микроразмножении земляники in vitro Эмистим добавляли в питательные среды на этапе ризогенеза. [1]
Современные иммуномодулирующие препараты перспективны, однако недостаточно разработаны элементы технологии при адаптации растений in vitro к условиям ex vitro.
Цель работы – изучить влияние иммуномодулятора Эмистим на процесс адаптации растений in vitro земляники к нестерильным условиям.
МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ
Работу выполняли в лаборатории ФГБНУ ВНИИСПК биотехнологическими методами в 2022–2024 годах. Объект исследования – микроразмноженные растения земляники шести промышленных сортов: Asia (NF 421), Darselect, Florence, Honeoye, Kimberly, Syria (NF 137). Исследования проводили в соответствии с методическими рекомендациями. [5, 7]
Схема опыта: 1. Замачивание высаживаемых микрорастений in vitro в растворе элиситора Эмистим в течение 1, 2 и 5 ч; 2. Полив почвенного субстрата раствором Эмистима перед высадкой растений. Контроль – растения без обработок Эмистимом. Концентрация рабочего раствора Эмистима – 0,001 мг/л. Обрабатывали биостимуляторами на фоне – дерновая земля: торф: перлит в соотношении 1:1:0,1.
Адаптация проходила по схеме: при 100% влажности воздуха – в течение 30 дн.; 70…80 – следующие 5 дн.; 60% – последние 5 дн.
Поливали субстрат водой на первых двух этапах только перед высадкой растений in vitro в грунт, исключая избыточное переувлажнение. Объем варианта – 20 микрорастений земляники каждого сорта.
Учеты биометрических показателей проводили в два этапа: через 30 дн. при 100%-й влажности и через последующие 10 дн. при пониженной. Общий срок адаптации ex vitro – 40 дн.
Условия адаптации: температура – 23°C, фотопериод – 16/8 ч, освещенность – 3 тыс. люкс. Процент адаптированных растений регистрировали через 40 дн. после пересадки.
РЕЗУЛЬТАТЫ
Выживаемость растений в нестерильных условиях во многом определяется их способностью к быстрому росту (табл. 1).
Таблица 1.
Влияние Эмистима на высоту микрорастений земляники, мм
Сорт | Срок адаптации, дн. | Способ и время обработки | ||||
контроль | замачивание | полив грунта | ||||
1 ч | 2 ч | 5 ч | ||||
Asia | 30 | 39,8 ± 1,8 | 46,2 ± 2,3 | 46,3 ± 3,7 | 36,9 ± 2,7 | 46,0 ± 2,5 |
40 | 50,6 ± 3,8 | 67,1 ± 3,0 | 53,9 ± 3,7 | 53,1 ± 3,1 | 57,0 ± 3,0 | |
Darselect | 30 | 35,0 ± 2,1 | 49,9 ± 3,9 | 43,0 ± 3,1 | 35,9 ± 1,5 | 43,3 ± 3,0 |
40 | 43,3 ± 4,0 | 65,4 ± 4,9 | 56,5 ± 4,2 | 43,0 ± 3,0 | 64,0 ± 4,0 | |
Florence | 30 | 46,8 ± 2,8 | 43,0 ± 2,7 | 47,0 ± 2,5 | 46,7 ± 2,3 | 50,8 ± 3,1 |
40 | 57,3 ± 3,6 | 62,0 ± 3,2 | 61,5 ± 3,2 | 59,5 ± 2,9 | 62,4 ± 4,0 | |
Honeoye | 30 | 46,5 ± 2,7 | 46,4 ± 2,7 | 49,8 ± 2,7 | 48,0 ± 2,0 | 47,1 ± 3,0 |
40 | 58,3 ± 3,0 | 53,8 ± 3,0 | 59,6 ± 2,7 | 53,7 ± 2,2 | 60,9 ± 3,7 | |
Kimberly | 30 | 37,6 ± 2,4 | 54,4 ± 3,7 | 48,2 ± 2,6 | 45,5 ± 3,0 | 46,9 ± 3,8 |
40 | 47,6 ± 3,0 | 71,5 ± 5,0 | 64,8 ± 3,4 | 68,8 ± 3,6 | 58,3 ± 4,0 | |
Siria | 30 | 50,5 ± 3,8 | 53,8 ± 3,1 | 59,6 ± 2,7 | 53,7 ± 2,2 | 50,9 ± 3,7 |
40 | 58,0 ± 3,0 | 71,7 ± 3,4 | 50,1 ± 2,7 | 50,7 ± 3,2 | 65,2 ± 3,1 | |
Среднее | 30 | 42,7 ± 2,6 | 49,0 ± 3,1 | 49,0 ± 2,9 | 44,5 ± 2,3 | 47,5 ± 3,0 |
40 | 52,5 ± 3,4 | 65,3 ± 3,8 | 57,7 ± 3,3 | 54,8 ± 3,0 | 65,2 ± 3,6 |
При обработке Эмистимом высота микрорастений превышала контроль. В среднем по сортам максимальные параметры высоты через 40 дн. адаптации отмечали в варианте с Эмистимом в течение 1 ч и при поливе грунта раствором элиситора (рис. 1).
Рис. 1. Высота микрорастений сорта Kimberly через 30 дн. после обработки Эмистимом: а – контроль; б – замачивание на 1 ч; в – замачивание на 2 ч; г – замачивание на 5 ч; д – полив грунта.
Обработка Эмистимом способствовала более интенсивному росту корней, по сравнению с контролем (табл. 2).
Таблица 2.
Влияние Эмистима на длину корней, мм
Сорт | Срок адаптации, дн. | Способ и время обработки | ||||
контроль | замачивание | полив грунта | ||||
1 ч | 2 ч | 5 ч | ||||
Asia | 30 | 71,8 ± 4,8 | 83,9 ± 3,4 | 78,8 ± 4,0 | 79,5 ± 3,0 | 74,6 ± 2,6 |
40 | 80,0 ± 4,4 | 98,1 ± 4,8 | 85,7 ± 5,1 | 90,6 ± 3,7 | 87,5 ± 3,8 | |
Darselect | 30 | 56,6 ± 3,1 | 64,4 ± 3,0 | 66,8 ± 2,5 | 68,7 ± 3,4 | 94,8 ± 4,6 |
40 | 58,0 ± 5,1 | 75,6 ± 3,6 | 77,9 ± 4,9 | 76,7 ± 3,4 | 109,0 ± 4,7 | |
Florence | 30 | 72,1 ± 5,5 | 59,0 ± 4,0 | 66,3 ± 3,3 | 68,3 ± 3,4 | 79,3 ± 3,2 |
40 | 76,4 ± 6,2 | 88,0 ± 3,1 | 86,7 ± 3,5 | 95,5 ± 3,7 | 97,6 ± 5,8 | |
Honeoye | 30 | 79,7 ± 3,0 | 69,5 ± 4,1 | 77,2 ± 3,7 | 73,3 ± 3,1 | 81,9 ± 3,7 |
40 | 89,4 ± 2,8 | 91,5 ± 3,8 | 101,3 ± 3,1 | 90,9 ± 2,5 | 91,5 ± 3,9 | |
Kimberly | 30 | 57,6 ± 4,1 | 71,5 ± 2,6 | 70,2 ± 4,0 | 67,9 ± 3,7 | 68,9 ± 3,5 |
40 | 73,8 ± 3,8 | 95,0 ± 4,1 | 81,1 ± 2,8 | 83,8 ± 4,5 | 79,5 ± 5,0 | |
Siria | 30 | 60,7 ± 4,0 | 89,8 ± 3,0 | 76,8 ± 3,1 | 80,6 ± 4,4 | 74,7 ± 3,3 |
40 | 80,6 ± 4,2 | 111,7 ± 4,2 | 98,5 ± 4,0 | 102,2 ± 4,6 | 100,3 ± 4,9 | |
Среднее | 30 | 66,5 ± 4,1 | 73,0 ± 3,0 | 72,7 ± 3,4 | 73,1 ± 3,5 | 78,3 ± 3,3 |
40 | 76,4 ± 4,4 | 93,4 ± 3,9 | 88,5 ± 3,9 | 90,0 ± 3,5 | 94,2 ± 4,2 |
Через 30 дн. адаптации разница с контролем составляла 10…18%, в конце адаптации – 15…25%. Развитие корневой системы, прежде всего образование корней второго порядка, при обработке Эмистимом шло гораздо активнее, что позволяет сократить сроки адаптации на 5…7 дн. (рис. 2).
Рис. 2. Состояние корневой системы растений сорта Kimberly через 30 дн. после обработки Эмистимом: а – контроль; б – замачивание на 1 ч; в – замачивание на 2 ч; г – замачивание на 5 ч; д – полив грунта.
На фоне более развитой корневой системы растения формировали большее количество листьев, по сравнению с контролем (табл. 3).
Таблица 3.
Влияние Эмистима на количество листьев адаптируемых растений земляники, шт./раст.
Сорт | Срок адаптации, дн. | Способ и время обработки | ||||
контроль | замачивание | полив грунта | ||||
1 ч | 2 ч | 5 ч | ||||
Asia | 30 | 5,4 ± 0,2 | 7,2 ± 0,5 | 7,2 ± 0,4 | 6,2 ± 0,2 | 6,3 ± 0,3 |
40 | 5,8 ± 0,3 | 7,7 ± 0,4 | 7,6 ± 0,4 | 6,5 ± 0,2 | 6,6 ± 0,3 | |
Darselect | 30 | 4,8 ± 0,2 | 8,2 ± 0,5 | 6,8 ± 0,5 | 5,0 ± 0,2 | 5,3 ± 0,2 |
40 | 4,7 ± 0,1 | 7,6 ± 0,4 | 6,5 ± 0,3 | 5,0 ± 0,2 | 6,4 ± 0,2 | |
Florence | 30 | 5,4 ± 0,2 | 5,1 ± 0,2 | 5,4 ± 0,1 | 5,1 ± 0,1 | 5,4 ± 0,2 |
40 | 5,3 ± 0,2 | 6,0 ± 0,2 | 5,7 ± 0,2 | 5,9 ± 0,2 | 5,8 ± 0,2 | |
Honeoye | 30 | 5,8 ± 0,2 | 6,1 ± 0,2 | 6,2 ± 0,3 | 6,1 ± 0,2 | 6,9 ± 0,3 |
40 | 5,4 ± 0,2 | 6,3 ± 0,2 | 6,1 ± 0,2 | 5,8 ± 0,1 | 6,3 ± 0,2 | |
Kimberly | 30 | 4,9 ± 0,1 | 5,6 ± 0,2 | 5,2 ± 0,2 | 5,2 ± 0,2 | 5,9 ± 0,3 |
40 | 5,6 ± 0,3 | 6,1 ± 0,2 | 5,3 ± 0,2 | 5,7 ± 0,2 | 5,4 ± 0,2 | |
Siria | 30 | 5,6 ± 0,2 | 6,2 ± 0,3 | 6,3 ± 0,2 | 5,5 ± 0,2 | 5,7 ± 0,3 |
40 | 5,7 ± 0,2 | 6,3 ± 0,2 | 6,2 ± 0,1 | 6,0 ± 0,2 | 6,2 ± 0,3 | |
Среднее | 30 | 5,3 ± 0,2 | 6,4 ± 0,3 | 6,2 ± 0,4 | 5,5 ± 0,2 | 5,9 ± 0,3 |
40 | 5,4 ± 0,2 | 6,7 ± 0,3 | 6,2 ± 0,2 | 5,8 ± 0,2 | 6,2 ± 0,2 |
Максимальное количество листьев через 30 дн. адаптации сформировалось под действием Эмистима в течение 1 ч (6,4 ± 0,3). Последующее выращивание растений в условиях постепенного снижения влажности (через 40 дн. после высадки) также подтверждает эффективность использования Эмистима на этапе адаптации земляники.
Использование раствора Эмистима на этапе высадки растений in vitro в нестерильные условия позволило увеличить выход адаптированных растений по отдельным генотипам до 100% (табл. 4). Наибольший выход адаптированных растений отмечали у сорта Florence при всех способах и сроках воздействия Эмистимом.
Таблица 4.
Приживаемость микрорастений на этапе ex vitro, %
Сорт | Способ и время обработки | ||||
контроль | замачивание | полив грунта | |||
1 ч | 2 ч | 5 ч | |||
Asia | 85,7 | 100,0 | 100,0 | 95,5 | 94,4 |
Darselect | 80,0 | 100,0 | 92,6 | 88,2 | 93,8 |
Florence | 91,7 | 100,0 | 100,0 | 100,0 | 100,0 |
Honeoye | 88,2 | 95,5 | 92,0 | 96,3 | 90,7 |
Kimberly | 83,2 | 100,0 | 95,5 | 97,0 | 100,0 |
Siria | 90,5 | 95,8 | 96,2 | 100,0 | 92,9 |
Среднее | 86,3 | 98,6 | 96,1 | 96,2 | 96,4 |
Выводы. В среднем по сортам приживаемость растений на этапе ex vitro при всех вариантах обработок Эмистимом была выше, чем в контроле, что подтверждает целесообразность его применения в системе производства посадочного материала земляники. Биометрические показатели при всех способах обработки растений препаратом Эмистим в среднем по сортам превышали показатели контроля, сроки адаптации сокращались на 5…7 дн. Оптимальным способом обработки растений можно считать замачивание базальной части розеток земляники в растворе Эмистима в течение 1 ч. Результаты исследований позволяют рекомендовать данную технологию к использованию в производстве качественного посадочного материала земляники.
About the authors
Olga V. Matsneva
Russian Research Institute of Fruit Crop Breeding
Author for correspondence.
Email: macneva@orel.vniispk.ru
Russian Federation, Zhilin village, Oryol region
Larisa V. Tashmatova
Russian Research Institute of Fruit Crop Breeding
Email: macneva@orel.vniispk.ru
PhD in Agricultural Science
Russian Federation, Zhilin village, Oryol regionTatiana M. Khromova
Russian Research Institute of Fruit Crop Breeding
Email: macneva@orel.vniispk.ru
PhD in Biological Sciences
Russian Federation, Zhilin village, Oryol regionReferences
- Belyakova L.V., Vysockij V.A., Alekseenko L.V. Primenenie elisitorov pri klonal’nom mikrorazmnozhenii zemlyaniki // Plodovodstvo i yagodovodstvo Rossii. 2011. T. 26. S. 194–200.
- Doroshenko N.P., Puzyrnova V.G., Troshin L.P. Usovershenstvovanie tekhnologii klonal’nogo mikrorazmnozheniya vinograda // «Magarach». Vinogradarstvo i vinodelie. 2022. T. 24 (2). S. 102–111. https://doi.org/10.35547/ IM.2022.46.55.001
- Zhidekhina T.V. Rezul’taty primeneniya bioregulyatorov rosta cirkon, emistim i ekost na yagodnyh kul’turah // Mat. VIII mezhd. Simp. “Novye i netradicionnye rasteniya i perspektivy ih ispol’zovaniya”. Moskva, 22-26 iyunya 2009 g. T. 2. 2009. 547 s.
- Kashirskaya N.Ya., Cukanova E.M., Kochkina A.M. Primenenie preparatov iz gruppy immuno- i rostoregulyatorov v zashchite yabloni ot parshi // Plodovodstvo i yagodovodstvo Rossii. 2017. T. 48 (2). S. 144–147.
- Kuharchik N.V., Kastrickaya M.S., Semenas S.E., i dr. Razmnozhenie plodovyh rastenij v kul’ture in vitro / Pod obshch. red. N.V. Kuharchik. Minsk: Belaruskaya navuka. 2016. 208 s.
- Macneva O.V., Tashmatova L.V. Klonal’noe mikrorazmnozhenie zemlyaniki – perspektivnyj metod sovremennogo pitomnikovodstva (obzor) // Sovremennoe sadovodstvo. 2019. № 4. S. 113–119. https://doi.org/10.24411/2312-6701-2019-10411
- Macneva O.V., Tashmatova L.V., Hromova T.M. Biotekhnologicheskie priemy optimizacii mikroklonal’nogo razmnozheniya i adaptacii genotipov zemlyaniki sadovoj (Fragaria × ananassa Duch.) (metodicheskie rekomendacii). Orel. VNIISPK. 2021. 24 s.
- Prusakova L.D., Malevannaya N.N., Belopuhov S.N., Vakulenko V.V. Regulyatory rosta rastenij s antistressovymi i immunoprotektornymi svojstvami // Agrohimiya. 2005. № 11. S. 76–86.
- Hapova S.A., Mal’cev D.E. Effektivnoe ispol’zovanie regulyatorov rosta pri kul’tivirovanii remontantnyh i obychnyh sortov zemlyaniki v Yaroslavskoj oblasti // Plodovodstvo i yagodovodstvo Rossii. 2012. T. 30. S. 119–128.
- Bulgari R., Franzoni G., Ferrante A. Biostimulants Application in Horticultural Cropsunder Abiotic Stress Conditions // Agronomy. 2019. Vol. 9. P. 306. https://doi.org/10.3390/agronomy9060306 www.mdpi.com/journal/agronomy
- Dewir Y.H., Al-Ali A.M., Al-Obeed R.S. et al. Biological Acclimatization of Micropropagated Al-Taif Rose (Rosa damascena f. trigintipetala (Diek) R. Keller) Plants Using Arbuscular Mycorrhizal Fungi Rhizophagus fasciculatus // Horticulturae. 2024. Vol. 10. P. 1120. https://doi.org/10.3390/horticulturae10101120
- El Bakouri Z. E., Meziani R., Mazri M.A. et al. Production cost of tissue cultured date palm cv. Mejhoul in Morocco: a 10 year based agribusiness study// Plant Cell, Tissue and Organ Culture (PCTOC). 2023. Vol. 152. P. 405–416. https://doi.org/10.1007/s11240-022-02417-y
- Grzelak1 M., Pacholczak A., Nowakowska K. The effect of several growth regulators and biostimulants on biochemical and physiological changes in acclimation of micropropagated Echinacea purpurea Moench. ‘Raspberry Trufe’ // Plant Cell, Tissue and Organ Culture (PCTOC). 2024. Vol. 159. No. 22. P. 1–17. https://doi.org/10.1007/s11240-024-02869-4
- Krakhmaleva I.L., Molkanova O.I., Orlova N.D. et al. In Vitro Morpho-Anatomical and Regeneration Features of Cultivars of Actinidia kolomikta (Maxim.) Maxim. // Horticulturae. 2024. Vol. 10. P. 1335. https://doi.org/10.3390/horticulturae1012133
- Kumar D., Mahadev M., Sanjeev S. et al. Tissue Culture Approaches to Strawberries Improvement // Agryculture & Food: E-Newsletter. 2024. Vol. 06. I. 08. P. 362–368. https://www.researchgate.net/publication/384241244
- Mukherjee E., Gantait S. Strawberry biotechnology: A review on progress over past 10 years // Scientia Horticulturae. 2024. Vol. 4. No. 1. P. 113618. https://doi.org/10.1016/j.scienta.2024.113618
- Samarskaya V.O., Malaeva E.V., Postnova M.V. Aspects of clonal micropropagation and conservation of plants in vitro // Natural Systems and Resources. 2019. Vol. 9. No. 3. PP. 13–22. https://doi.org/10.15688/nsr.jvolsu.2019.3.2
- Sharma N., Kumar N., James J. et al. Strategies for successful acclimatization and hardening of in vitro regenerated plants: Challenges and innovations in micropropagation techniques // Plant Science Today (Early Access). 2023. https://doi.org/10.14719/pst.2376
- Soppelsa S., Kelderer M., Casera C. et al. Foliar Applications of Biostimulants Promote Growth, Yield and Fruit Quality of Strawberry Plants Grown under Nutrient Limitation // Agronomy. 2019. Vol. 9. P. 483. https://doi.org/10.3390/agronomy9090483
- Zydlik P., Zydlik Z., Kafkas N.E. The Effect of the Foliar Application of Biostimulants in a Strawberry Field Plantation on the Yield and Quality of Fruit, and on the Content of Health-Beneficial Substances // Agronomy. 2024. Vol. 14. P. 1786. https://doi.org/10.3390/agronomy1408178
Supplementary files
