Переход от 2D к 3D in vitro модели плоскоклеточного рака носовой перегородки: изменение профиля экспрессии опухоль-ассоциированных генов в норме и после облучения нейтронами



Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Обоснование. Опухоли полости носа считаются одной из наиболее сложных локализаций с точки зрения дозиметрического планирования в лучевой терапии. Для моделирования этого типа плоскоклеточного рака наиболее доступна линия RPMI-2650, при этом опубликовано крайне мало работ по изучению биологических эффектов, вызванных облучением моделей на основе этих клеток.

Цель. Оценить изменение профиля экспрессии опухоль-ассоциированных генов при переходе от 2D к 3D модели плоскоклеточного рака носовой перегородки человека и сравнить ответ опухолевых клеток в составе моделей на однократное облучение нейтронами.

Материалы и методы. Фенотипическую характеристику клеток RPMI-2650 проводили с помощью иммуноцитохимического окрашивания. Формирование 3D сфероидов проводили в культуральной посуде с ультранизкой адгезией. Для облучения 2D и 3D моделей использовали генератор нейтронов НГ-14. Оценку экспрессии опухоль-ассоциированных генов проводили методом ОТ-ПЦР-РВ.

Результаты. Клетки линии RPMI-2650 имели кератин17+ виментин+ фенотип, характерный для линий, выделенных из метастаза первичной опухоли. При переходе от 2D к 3D условиям культивирования относительная экспрессия генов KRT5, KRT7, KRT8, KRT18, KRT19, YAP1, HIF1A, PTEN, NOTCH1, TIMP1, MMP9, TP53, MKI67, CDKN2A и TGFBR1 значимо не изменялась. В то же время наблюдали подавление генов кератинов 17 и 10, а также повышение уровня экспрессии генов CDH1, CD44, VIM, TP63, PIK3CA, TGFB1, MMP2 и TIMP2. Через 24 часа после облучения нейтронами было выявлено повышение CDKN2A в 2D и 3D моделях, рост экспрессии KRT10 и TIMP1 только в сфероидах, а также рост TIMP2, TP63 и CD44 только в монослойной культуре. Экспрессия гена виментина возрастала в облученной 2D и снижалась в 3D опухолевой модели.

Заключение. Переход от 2D к 3D модели RPMI-2650 сопровождался снижением уровня генов, влияющих на устойчивость опухолевых клеток к иммуно- и радиотерапии, и одновременным повышением экспрессии генов, обеспечивающих прогрессирование, метастазирование и лекарственную устойчивость плоскоклеточного рака головы и шеи. Однократное облучение нейтронами монослойной культуры приводило к росту экспрессии генов, ассоциированных с неблагоприятным исходом заболевания, в то время как в 3D модели нейтроны вызывали более сложный ответ, включающий регулирование клеточного цикла, развитие фиброза и специфическую перестройку цитоскелета.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

Анна Геннадьевна Соболева

НИИ морфологии человека имени академика А.П. Авцына ФГБНУ «Российский научный центр хирургии имени академика Б.В. Петровского», Москва, Россия;
НИИ молекулярной и клеточной медицины ФГАОУ ВО "Российский университет дружбы народов имени Патриса Лумумбы", Москва, Россия

Email: annasobo@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-9158-1933

канд. биол. наук, ст. науч. сотр., ст. науч. сотр.

Россия, Москва; Москва

Ирина Владимировна Арутюнян

НИИ морфологии человека имени академика А.П. Авцына ФГБНУ «Российский научный центр хирургии имени академика Б.В. Петровского»; НИИ молекулярной и клеточной медицины ФГАОУ ВО "Российский университет дружбы народов имени Патриса Лумумбы"

Автор, ответственный за переписку.
Email: labrosta@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-4344-8943

кандидат биологических наук, старший научный сотрудник лаборатории роста и развития 

Россия

Доржу Васильевич Бальчир

Email: dbalchir@mail.ru

Вячеслав Олегович Сабуров

Email: vosaburov@gmail.com

Георгий Андреевич Лосицкий

Email: glosierror404@gmail.com

Софья Анатольевна Александрова

Email: sofia.aleksa@mail.ru

Андрей Витальевич Макаров

Email: anvitmak@yandex.ru

Андрей Владимирович Ельчанинов

Email: elchandrey@yandex.ru

Список литературы

  1. 1. Binazzi A, Ferrante P, Marinaccio A. Occupational exposure and sinonasal cancer: a systematic review and meta-analysis. BMC Cancer. 2015 Feb 13;15:49. doi: 10.1186/s12885-015-1042-2.
  2. 2. Nishikawa A, Nagano K, Kojima H, Fukushima S, Ogawa K. Pathogenesis of chemically induced nasal cavity tumors in rodents: contribution to adverse outcome pathway. J Toxicol Pathol. 2024 Jan;37(1):11-27. doi: 10.1293/tox.2023-0098.
  3. 3. Mesia R, Iglesias L, Lambea J, Martínez-Trufero J, Soria A, Taberna M, Trigo J, Chaves M, García-Castaño A, Cruz J. SEOM clinical guidelines for the treatment of head and neck cancer (2020). Clin Transl Oncol. 2021 May;23(5):913-921. doi: 10.1007/s12094-020-02533-1. Epub 2021 Feb 26. Erratum in: Clin Transl Oncol. 2021 May;23(5):1001. doi: 10.1007/s12094-021-02582-0.
  4. 4. Sroussi HY, Epstein JB, Bensadoun RJ, Saunders DP, Lalla RV, Migliorati CA, Heaivilin N, Zumsteg ZS. Common oral complications of head and neck cancer radiation therapy: mucositis, infections, saliva change, fibrosis, sensory dysfunctions, dental caries, periodontal disease, and osteoradionecrosis. Cancer Med. 2017 Dec;6(12):2918-2931. doi: 10.1002/cam4.1221.
  5. 5. Dutta R, Dubal PM, Svider PF, Liu JK, Baredes S, Eloy JA. Sinonasal malignancies: A population-based analysis of site-specific incidence and survival. Laryngoscope. 2015 Nov;125(11):2491-7. doi: 10.1002/lary.25465.
  6. 6. Kim SA, Chung YS, Lee BJ. Recurrence patterns of sinonasal cancers after a 5-year disease-free period. Laryngoscope. 2019 Nov;129(11):2451-2457. doi: 10.1002/lary.27866.
  7. 7. Смык Д.И., Гулидов И.А., Гордон К.Б., Лепилина О.Г., Макеенкова Т.С., Татаренко М.А., Иванов С.А., Каприн А.Д. Повторное облучение локального рецидива рака полости носа с применением протонной терапии. Вопросы онкологии. 2023. Т. 69. № 1. С. 127-134.
  8. 8. Patel SH, Wang Z, Wong WW, Murad MH, Buckey CR, Mohammed K, Alahdab F, Altayar O, Nabhan M, Schild SE, Foote RL. Charged particle therapy versus photon therapy for paranasal sinus and nasal cavity malignant diseases: a systematic review and meta-analysis. Lancet Oncol. 2014 Aug;15(9):1027-38. doi: 10.1016/S1470-2045(14)70268-2.
  9. 9. Saito T, Nakayama M, Ohnishi K, Tanaka S, Nakamura M, Murakami M, Matsumoto S, Baba K, Fujii K, Mizumoto M, Tabuchi K, Sakurai H. Proton beam therapy in multimodal treatment for locally advanced squamous cell carcinoma of the nasal cavity and paranasal sinus. Radiat Oncol. 2023 Jun 29;18(1):106. doi: 10.1186/s13014-023-02296-3.
  10. 10. Lin CJ, Grandis JR, Carey TE, Gollin SM, Whiteside TL, Koch WM, Ferris RL, Lai SY. Head and neck squamous cell carcinoma cell lines: established models and rationale for selection. Head Neck. 2007 Feb;29(2):163-88. doi: 10.1002/hed.20478.
  11. 11. Moore GE, Sandberg AA. Studies of a human tumor cell line with a diploid karyotype. Cancer. 1964 Feb;17:170-5. doi: 10.1002/1097-0142(196402)17:2<170::aid-cncr2820170206>3.0.co;2-n.
  12. 12. Zhan J, Qi Y, Fu Y, Zheng J, Wu J, Wei X, Zeng M. LncRNA ZFAS1 Alleviated NLRP3 Inflammasome-Mediated Pyroptosis through Regulating miR-96-5p/Smad7 Signaling in Allergic Rhinitis. Int Arch Allergy Immunol. 2024 Mar 14:1-14. doi: 10.1159/000535646.
  13. 13. Lewandowska-Polak A, Brauncajs M, Jarzębska M, Pawełczyk M, Kurowski M, Makowska J, Kowalski ML. Parainfluenza virus infection enhances NSAIDs-induced inhibition of PGE2 generation and COX-2 expression in human airway epithelial cells. Adv Med Sci. 2019 Sep;64(2):338-343. doi: 10.1016/j.advms.2019.04.004.
  14. 14. Ladel S, Schlossbauer P, Flamm J, Luksch H, Mizaikoff B, Schindowski K. Improved In Vitro Model for Intranasal Mucosal Drug Delivery: Primary Olfactory and Respiratory Epithelial Cells Compared with the Permanent Nasal Cell Line RPMI 2650. Pharmaceutics. 2019 Aug 1;11(8):367. doi: 10.3390/pharmaceutics11080367.
  15. 15. Barlang LA, Weinbender K, Merkel OM, Popp A. Characterization of critical parameters using an air-liquid interface model with RPMI 2650 cells for permeability studies of small molecules. Drug Deliv Transl Res. 2023 Nov 17. doi: 10.1007/s13346-023-01474-w.
  16. 16. Sibinovska N, Žakelj S, Trontelj J, Kristan K. Applicability of RPMI 2650 and Calu-3 Cell Models for Evaluation of Nasal Formulations. Pharmaceutics. 2022 Feb 6;14(2):369. doi: 10.3390/pharmaceutics14020369.
  17. 17. Deruyver L, Rigaut C, Gomez-Perez A, Lambert P, Haut B, Goole J. In vitro Evaluation of Paliperidone Palmitate Loaded Cubosomes Effective for Nasal-to-Brain Delivery. Int J Nanomedicine. 2023 Mar 1;18:1085-1106. doi: 10.2147/IJN.S397650.
  18. 18. Danielsson A, Karlsson E, Delle U, Helou K, Mercke C. The biological effect of pentoxifylline on the survival of human head and neck cancer cells treated with continuous low and high dose-rate irradiation. J Cancer Res Clin Oncol. 2005 Jul;131(7):459-67. doi: 10.1007/s00432-004-0665-5.
  19. 19. Emer C, Hildebrand LS, Friedrich B, Tietze R, Fietkau R, Distel LV. In Vitro Analysis of Superparamagnetic Iron Oxide Nanoparticles Coated with APTES as Possible Radiosensitizers for HNSCC Cells. Nanomaterials (Basel). 2023 Jan 12;13(2):330. doi: 10.3390/nano13020330.
  20. 20. Arutyunyan I, Jumaniyazova E, Makarov A, Fatkhudinov T. In Vitro Models of Head and Neck Cancer: From Primitive to Most Advanced. J Pers Med. 2023 Nov 3;13(11):1575. doi: 10.3390/jpm13111575.
  21. 21. Manduca N, Maccafeo E, De Maria R, Sistigu A, Musella M. 3D cancer models: One step closer to in vitro human studies. Front Immunol. 2023 Apr 11;14:1175503. doi: 10.3389/fimmu.2023.1175503.
  22. 22. Lan YJ, Chen H, Chen JQ, Lei QH, Zheng M, Shao ZR. Immunolocalization of vimentin, keratin 17, Ki-67, involucrin, β-catenin and E-cadherin in cutaneous squamous cell carcinoma. Pathol Oncol Res. 2014 Apr;20(2):263-6. doi: 10.1007/s12253-013-9690-5.
  23. 23. Thul PJ, Lindskog C. The human protein atlas: A spatial map of the human proteome. Protein Sci. 2018 Jan;27(1):233-244. doi: 10.1002/pro.3307.
  24. 24. Melissaridou S, Wiechec E, Magan M, Jain MV, Chung MK, Farnebo L, Roberg K. The effect of 2D and 3D cell cultures on treatment response, EMT profile and stem cell features in head and neck cancer. Cancer Cell Int. 2019 Jan 14;19:16. doi: 10.1186/s12935-019-0733-1.
  25. 25. Gheytanchi E, Naseri M, Karimi-Busheri F, Atyabi F, Mirsharif ES, Bozorgmehr M, Ghods R, Madjd Z. Morphological and molecular characteristics of spheroid formation in HT-29 and Caco-2 colorectal cancer cell lines. Cancer Cell Int. 2021 Apr 13;21(1):204. doi: 10.1186/s12935-021-01898-9.
  26. 26. Fontana F, Raimondi M, Marzagalli M, Sommariva M, Limonta P, Gagliano N. Epithelial-To-Mesenchymal Transition Markers and CD44 Isoforms Are Differently Expressed in 2D and 3D Cell Cultures of Prostate Cancer Cells. Cells. 2019 Feb 11;8(2):143. doi: 10.3390/cells8020143.
  27. 27. Jiang Y, Zhou T, Shi Y, Feng W, Lyu T. A SMYD3/ITGB6/TGFβ1 Positive Feedback Loop Promotes the Invasion and Adhesion of Ovarian Cancer Spheroids. Front Oncol. 2021 Sep 21;11:690618. doi: 10.3389/fonc.2021.690618.
  28. 28. Jang M, Koh I, Lee SJ, Cheong JH, Kim P. Droplet-based microtumor model to assess cell-ECM interactions and drug resistance of gastric cancer cells. Sci Rep. 2017 Jan 27;7:41541. doi: 10.1038/srep41541.
  29. 29. Zhang H, Zhang Y, Xia T, Lu L, Luo M, Chen Y, Liu Y, Li Y. The Role of Keratin17 in Human Tumours. Front Cell Dev Biol. 2022 Feb 24;10:818416. doi: 10.3389/fcell.2022.818416.
  30. 30. Nair RR, Hsu J, Jacob JT, Pineda CM, Hobbs RP, Coulombe PA. A role for keratin 17 during DNA damage response and tumor initiation. Proc Natl Acad Sci U S A. 2021 Mar 30;118(13):e2020150118. doi: 10.1073/pnas.2020150118.
  31. 31. Wang W, Lozar T, Golfinos AE, Lee D, Gronski E, Ward-Shaw E, Hayes M, Bruce JY, Kimple RJ, Hu R, Harari PM, Xu J, Keske A, Sondel PM, Fitzpatrick MB, Dinh HQ, Lambert PF. Stress Keratin 17 Expression in Head and Neck Cancer Contributes to Immune Evasion and Resistance to Immune-Checkpoint Blockade. Clin Cancer Res. 2022 Jul 1;28(13):2953-2968. doi: 10.1158/1078-0432.CCR-21-3039.
  32. 32. Jung EK, Kim SA, Salam SMA, Lee KH, Yoon TM. Role of Keratin-10 in Tumor Progression and Radioresistance of Laryngeal Cancer Cells. Anticancer Res. 2025 Mar;45(3):1035-1045. doi: 10.21873/anticanres.17490.
  33. 33. Lian GY, Wang QM, Mak TS, Huang XR, Yu XQ, Lan HY. Inhibition of tumor invasion and metastasis by targeting TGF-β-Smad-MMP2 pathway with Asiatic acid and Naringenin. Mol Ther Oncolytics. 2021 Jan 20;20:277-289. doi: 10.1016/j.omto.2021.01.006.
  34. 34. Stuelten CH, DaCosta Byfield S, Arany PR, Karpova TS, Stetler-Stevenson WG, Roberts AB. Breast cancer cells induce stromal fibroblasts to express MMP-9 via secretion of TNF-alpha and TGF-beta. J Cell Sci. 2005 May 15;118(Pt 10):2143-53. doi: 10.1242/jcs.02334.
  35. 35. Li Y, Giovannini S, Wang T, Fang J, Li P, Shao C, Wang Y; TOR centre; Shi Y, Candi E, Melino G, Bernassola F. p63: a crucial player in epithelial stemness regulation. Oncogene. 2023 Nov;42(46):3371-3384. doi: 10.1038/s41388-023-02859-4.
  36. 36. Rezakhani L, Alizadeh M, Alizadeh A. A three dimensional in vivo model of breast cancer using a thermosensitive chitosan-based hydrogel and 4 T1 cell line in Balb/c. J Biomed Mater Res A. 2021 Jul;109(7):1275-1285. doi: 10.1002/jbm.a.37121.
  37. 37. Abbas ZN, Al-Saffar AZ, Jasim SM, Sulaiman GM. Comparative analysis between 2D and 3D colorectal cancer culture models for insights into cellular morphological and transcriptomic variations. Sci Rep. 2023 Oct 26;13(1):18380. doi: 10.1038/s41598-023-45144-w.
  38. 38. Compagnone M, Gatti V, Presutti D, Ruberti G, Fierro C, Markert EK, Vousden KH, Zhou H, Mauriello A, Anemone L, Bongiorno-Borbone L, Melino G, Peschiaroli A. ΔNp63-mediated regulation of hyaluronic acid metabolism and signaling supports HNSCC tumorigenesis. Proc Natl Acad Sci U S A. 2017 Dec 12;114(50):13254-13259. doi: 10.1073/pnas.1711777114.
  39. 39. García-Escudero R, Segrelles C, Dueñas M, Pombo M, Ballestín C, Alonso-Riaño M, Nenclares P, Álvarez-Rodríguez R, Sánchez-Aniceto G, Ruíz-Alonso A, López-Cedrún JL, Paramio JM, Lorz C. Overexpression of PIK3CA in head and neck squamous cell carcinoma is associated with poor outcome and activation of the YAP pathway. Oral Oncol. 2018 Apr;79:55-63. doi: 10.1016/j.oraloncology.2018.02.014.
  40. 40. Chen X, Cao Y, Sedhom W, Lu L, Liu Y, Wang H, Oka M, Bornstein S, Said S, Song J, Lu SL. Distinct roles of PIK3CA in the enrichment and maintenance of cancer stem cells in head and neck squamous cell carcinoma. Mol Oncol. 2020 Jan;14(1):139-158. doi: 10.1002/1878-0261.12584.
  41. 41. Antonelli F. 3D Cell Models in Radiobiology: Improving the Predictive Value of In Vitro Research. Int J Mol Sci. 2023 Jun 25;24(13):10620. doi: 10.3390/ijms241310620.
  42. 42. Wang Y, Zhou C, Li T, Luo J. Prognostic value of CDKN2A in head and neck squamous cell carcinoma via pathomics and machine learning. J Cell Mol Med. 2024 May;28(9):e18394. doi: 10.1111/jcmm.18394.
  43. 43. Arutyunyan IV, Soboleva AG, Gordon KB, Kudashkina DS, Miroshnichenko DA, Polyakov AP, Rebrikova IV, Makarov AV, Lokhonina AV, Fatkhudinov TK. Differential Markers of Subpopulations of Epithelial Cells of the Larynx in Squamous Cell Carcinoma. Bull Exp Biol Med. 2022 Aug;173(4):553-559. doi: 10.1007/s10517-022-05588-y.
  44. 44. Fornieles G, Núñez MI, Expósito J. Matrix Metalloproteinases and Their Inhibitors as Potential Prognostic Biomarkers in Head and Neck Cancer after Radiotherapy. Int J Mol Sci. 2023 Dec 30;25(1):527. doi: 10.3390/ijms25010527.
  45. 45. Yu Z, Xu C, Song B, Zhang S, Chen C, Li C, Zhang S. Tissue fibrosis induced by radiotherapy: current understanding of the molecular mechanisms, diagnosis and therapeutic advances. J Transl Med. 2023 Oct 9;21(1):708. doi: 10.1186/s12967-023-04554-0.
  46. 46. Zamulaeva I, Matchuk O, Selivanova E, Mkrtchian L, Yakimova A, Gusarova V, Lipunov N, Krikunova L, Ivanov S, Kaprin A. Effects of Fractionated Radiation Exposure on Vimentin Expression in Cervical Cancers: Analysis of Association with Cancer Stem Cell Response and Short-Term Prognosis. Int J Mol Sci. 2023 Feb 7;24(4):3271. doi: 10.3390/ijms24043271.
  47. 47. Galarza TE, Mohamad NA, Táquez Delgado MA, Vedoya GM, Crescenti EJ, Bergoc RM, Martín GA, Cricco GP. Histamine prevents radiation-induced mesenchymal changes in breast cancer cells. Pharmacol Res. 2016 Sep;111:731-739. doi: 10.1016/j.phrs.2016.07.039.
  48. 48. Akil H, Rouanet J, Viallard C, Besse S, Auzeloux P, Chezal JM, Miot-Noirault E, Quintana M, Degoul F. Targeted Radionuclide Therapy Decreases Melanoma Lung Invasion by Modifying Epithelial-Mesenchymal Transition-Like Mechanisms. Transl Oncol. 2019 Nov;12(11):1442-1452. doi: 10.1016/j.tranon.2019.07.015.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML

© Эко-Вектор,



СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: ПИ № ФС 77 - 86496 от 11.12.2023 г
СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: ЭЛ № ФС 77 - 80673 от 23.03.2021 г
.